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采样后及时送检，2小时内检测 送检液用旋涡器充分振荡，采用平板倾注法对其进行活菌计数 用无菌注射器抽取磷酸盐缓冲液，从待检内镜活检口注入，用无菌试管从活检出口收集 监测采样部位为内镜的内腔面 送检液用旋涡器充分振荡，分别接种至血平板、中国蓝平板和SS平板，均匀涂布，35℃培养48小时，观察有无致病菌生长
可以用抽样检测的方法来估算试管中酵母菌总数 从试管中吸出培养液进行计数之前，应将试管轻轻振荡几次 用血细胞计数板计数酵母菌数量时只统计方格内细胞 营养条件井非影响酵母菌种群数量变化的唯一因素
没有加入相应的中和剂 试验方法应该为无菌试验 应该取样1.0ml进行活菌计数 0cfu/ml并不代表无菌 无菌试验需经37℃培养7天
采用平板计数法获得的菌落数往往少于实际的活菌数 当样品的稀释度足够高时，一个活菌会形成一个菌落 为了保证结果准确，一般采用密度较大的平板进行计数 在某一浓度下涂布三个平板，若三个平板统计的菌落数差别不大，则应以它们的平均值作为统计结果
利用稀释涂布平板法对微生物进行计数时只选择菌落数在30—300的稀释平板统计并计算平均数 接种时连续划线的目的是将聚集的菌种逐步稀释获得单个菌落，每次换方向划线时都需对接种环灭菌 根据菌落数统计培养液中活菌数往往比实际活菌数少，原因是有可能2个或多个细菌形成一个菌落 鉴别纤维素分解菌的刚果红培养基要求只含纤维素为唯一碳源
分离土壤中不同的微生物，要采用不同的稀释度 测定土壤样品中的活菌数目，常用显微镜直接计数法 提纯和分离严格厌氧型微生物，一般不用稀释涂布平板法 分离能分解尿素的细菌，要以尿素作为培养基中唯一氮源
土壤中分离不同的微生物要采用不同的稀释度 在活菌计数法中，统计的菌落数往往比活菌的实际数目多 无菌技术也是要防止实验者被微生物感染 筛选纤维素分解菌的实验中，选择培养的目的是增大样品中目的菌株的浓度
培养酵母菌时，无须去除培养液中的溶解氧 在实验后应该对计数板进行认真擦洗 为了方便酵母菌计数，培养后期的培养液应先稀释后再计数 使用血细胞计数板时，先放置盖玻片，然后使培养液从边缘处自行渗入计数室
酵母菌在培养过程中，既有有氧呼吸，也有无氧呼吸 培养过程中每天定时采用抽样检测法估算酵母菌种群数量 酵母菌的计数方法一般采用血球计数板计数法 在整个培养过程中，酵母菌的种群增长曲线为“J”型
分离土壤中不同的微生物，要采用不同的稀释度 测定土壤样品中的活菌数目，常用显微镜直接计数法 提纯和分离严格厌氧型微生物，一般不用稀释涂布平板法 分离能分解尿素的细菌，要以尿素作为培养基中唯一氮源
经乳酸菌发酵产生的饮料都是乳酸菌饮料 乳酸菌饮料是含乳饮料 乳酸菌饮料根据其是否经过杀菌处理而分为活菌型和非活菌型 乳酸菌饮料在生产过程中可以与果汁、甜味剂和其他植物提取液调配而成
在大肠杆菌的分离和培养实验中，划线后盖好培养皿，再将培养皿倒置培养 在富含纤维素的环境中寻找纤维素分解菌，符合生物与环境相适应的生物学观点 在酿酒生产上，常向发酵罐中加少量尿素，其目的是作为氮源，用于酵母菌合成蛋白质和核酸 采用显微镜直接计数法来测定培养液中某活菌数目
没有加入相应的中和剂 试验方法应该为无菌试验 应该取样1.0ml进行活菌计数 0cfu／ml并不代表无菌 无菌试验需经37℃培养7d
没有加入相应的中和剂 试验方法应该为无菌试验 应该取样1.0ml进行活菌计数 0CFU/ml并不代表无菌 无菌试验需经37℃培养7天
监测采样部位为内镜的内腔面 用无菌注射器抽取磷酸盐缓冲液，从待检内镜活检口注入，用无菌试管从活检出口收集 采样后及时送检，2小时内检测 送检液用旋涡器充分震荡，采用平板倾注法对其进行活菌计数 送检液用旋涡器充分震荡，分别接种至血平板、中国兰平板和SS平板，均匀涂布，35℃培养48小时，观察有无致病菌生长
培养用具必须经过严格的灭菌处理，培养液则不需灭菌 培养酵母菌时，必须去除培养液中的溶解氧 从瓶中吸出培养液进行计数之前，不必摇匀培养瓶中的培养液 为了方便酵母菌计数，培养后期的培养液应先稀释再计数
活菌计数时，菌落数＜100按实数报告 活菌计数时，菌落数＞100按实数报告 活菌计数时，菌落数＞100采用两位数字，在两位有效数字后面的数值四舍五入，再乘以10的指数 在报告菌落数为“无法计数”时，应注明稀释倍数 活菌计数时，菌落数＜100采用两位数字，在两位有效数字后面的数值四舍五入再乘以10的指数
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